标签：mRNA 3’端测序

Quant-seq表达谱文库构建试剂盒

QuantSeq 3′ mRNA-seq文库构建试剂盒是以mRNA靠近3′ 端序列进行文库构建，文库可兼容Illumina和Ion Torrent测序平台。每个转录本只产生一个片段，因此能准确进行基因表达定量，同时减少测序深度，能使更多样本混样测序。
产品优势
快速简单的一体化实验方案: 从总RNA到可用于测序的文库时间不超过4.5小时；
每个转录本仅有一个片段产生—可进行全基因组范围的基因表达分析；
能稳定、灵敏检测低丰度的转录本；
适用于低起始量（100pg（FWD）或10ng（REV）总RNA）及低质量RNA（如FFPE样本）；
可高效替代芯片检测或传统的RNA测序，友好匹配自动化工作站；
在Blubee基因组分析平台上免费进行数据分析；
NEW! 节约成本，优化的globin mRNA去除流程可用于QuantSeq文库构建；Dual indexes能支持9,216个 i5/i7 index，或者可选择96个unique index，同时提供能够检测、排除扩增偏好性的UMIs。

建库流程
QuantSeq 文库构建试剂盒通过oligo dT引物特异逆转录含poly (A)尾的mRNA，第二链使用随机引物进行合成。由于插入片段的大小是由第二链合成引物和poly(A)尾之间的距离决定的，因此无需额外进行 RNA 片段化。随后的PCR可以提供9,216个不同的i5/i7index组合用于Illumina平台，48个index 用于Ion Torrent平台。能够实现更多样本混样测序。

Lexogen提供两个版本的Illumina Quantseq 3′ mRNA-Seq文库构建试剂盒，不同处在于Illumina接头序列的位置。下图绿色的是Read 1的序列，蓝色的是Read 2的序列。Quant-Seq Forward (FWD) 在第二链合成的引物中包含Read 1序列（Fig. 1, 左）。因此，测序的方向是朝向poly(A)尾的方向。推荐使用这种方法进行基因表达的分析。如果研究关注的是转录的3’端序列或者双端测序策略，推荐使用QuantSeq Reverse (REV)，Read 1 接头序列由oligo-(dT)引物引入（Fig. 1, 右）。

Figure 1 | QuantSeq 3′ mRNA-Seq FWD 文库构建试剂盒(左图) 和 QuantSeq 3′ mRNA-Seq REV文库构建试剂盒 (右图) 建库流程图。
左边：QuantSeq FWD试剂盒Read 1（从绿色P5接头部分开始）测序对应的是靠近mRNA 3′ 端序列，可以使用Illumina测序引物进行测序，且费用较低。右边：QuantSeq REV 试剂盒测序位置是 Read 1 和Read 2 的互换，Read 1 能够直接检测到转录本的末端。QuantSeq REV Read 1测序需要定制化的测序引物（CSP,包含在试剂盒内）。

性能表现
3’ 端链特异性比对以FDA提供的测序质控 (SEQC) 标准样品A和B为样本（A和B分别是ERCC外源RNA与有参RNA的混合物1和混合物2）1,2，用QuantSeq试剂盒进行文库构建，测序数据与近期生物分子资源实验室协会 (ABRF) 发布的NGS研究中的mRNA-Seq数据组比对3。在常规mRNASeq中，测序Reads覆盖转录本的全长，而QuantSeq的Reads仅覆盖转录本的3’端(Fig.2)。QuantSeq在精确检测基因表达水平的同时，节省了大于90%的测序深度。由于spike-in转录本(RNA质控品)仅来源于正义链的转录，因此链特异性的评估可以不依赖于于任何基因组注释。在各种情况下QuantSeq数据均显示出高于99.9%的链特异性，而两个被评估的mRNA-Seq SEQC数据集(data sets)链特异性仅分别为93.4%和97.8%3。QuantSeq可降低噪音，能够实现准确检测及定量反义转录本。

Figure 2 | QuantSeq和标准mRNA-seq的覆盖度与标准化转录本长度的对比。RSeQC是所有转录本（面积），ERCC混合物（线性，QuantSeq (彩色)和mRNA-Seq (灰色) ）的覆盖度信息。曲线面积值(AUC)作为测序覆盖度的测量尺度。

QuantSeq量化范围宽–6个数量级
为了分析QuantSeq的基因计算准确性，用ERCC 的spike-in转录本覆盖reads数与input的分子数作图进行分析 (Fig.3)。在线性模型评估和Spearman关联性评估中，QuantSeq展现出了非常高的input-output关联性和基因表达测定的准确性。

Figure 3 | QuantSeq 获得的ERCC reads数与给定的input间存在极好的关联性。

基因差异表达分析
通过使用“erccdash- board” 软件 4，对QuantSeq和常规mRNA-Seq的基因差异表达的检测能力进行了对比。当测序的Reads数由10M降低到0.625M，QuantSeq维持了相当高的曲线面积值（AUC 0.860-0.897），而常规mRNA-Seq的曲线面积值较低，在0.736到0.776之间(Fig. 4).

Figure 4 | QuantSeq和常规mRNA-Seq在基因差异表达分析上的性能表现。给定的ERCC ExFold Spike-In Mix1和Mix 2间的倍数变化(4:1 / , 1:1.5 / , 1:2 / ) 用于评估真假阳性率(TPRs 和FPRs)。最优的基因差异表达检测体现在最大值为1的曲线面积(AUC)。用AUC对 检测到的ERCC RNA reads进行评估(测序数据量从10 M降到0.625 M)。

Quantseq在低质量RNA中的表现
Quantseq在高质量和低质量（FFPE）样本中有很好的相关性
用同一来源的不同质量RNA样本进行比较，评估Quantseq适用于高度降解的样本（如FFPE样本）的能力。

将人的MOLP-8肿瘤细胞系分成两份，一份进行新鲜冷冻，一份处理成FFPE样本，从而使同一个来源的样本得到不同质量的RNA。用RIN值(RNA完整度)来区分RNA的质量。RIN值大于8表示RNA质量高。对于严重降解的样本，RIN值不适用于质量的评估，因此使用DV200值(大于200 nt的RNA片段的分布值)来表示RNA质量，低完整度的RNA对应低DV200值。

RNA提取后，FFPE样本的DV200值为87% (RIN值2.8)，冷冻样本RIN值为8.3。使用50ng总RNA，用QuantSeq FWD 试剂盒进行文库构建。FFPE样本提取的RNA，即使DV200值低至23%(数据未显示)，Quan-tseq 仍能成功构建文库。FFPE样本有对应的低质量RNA建库操作流程，对应冷冻样本，应用标准操作流程。文库在Hiseq2500上进行用 1x 50 bp读长测序(Fig.5)。

Figure 5 | 安捷伦2100 HS DNA芯片检测QuantSeq 3’mRNASeq FWD试剂盒构建的FFPE(蓝色)或冷冻样本(红色)的RNA文库。对于降解的样本来说，文库是一个较为平滑的分布，没有明显可见的锯齿突起，且整体片段偏小。平均片段长度204bp(FFPE)和286bp(冷冻样本)。

覆盖度与转录本的长度的相关性显示覆盖度关注于转录本的3’端，与RNA的质量无关(Fig.6)。但是，由于QuantSeq FWD文库对poly(A)端进行测序，覆盖度取决于文库的片段大小和测序读长。FFPE样本文库明显比冷冻样本文库短，因此，会更多的读取转录本的3’端，并反映在覆盖曲线中。

Figure 6 | 来源于FFPE-RNA(蓝色)和冷冻保存RNA(红色)的NGS文库的Quantseq read均一化覆盖度与百分位数转录本长度的相关性。

FFPE-RNA文库和冷冻保存RNA文库的基因表达的相关性很高（R² = 0.86），表示Quantseq能在不同质量的RNA中表现稳定(Fig.7)。

Figure 7 | FFPE和冷冻样本的基因表达的相关性。

Figure 8 | QuantSeq在FFPE和冷冻样本中以2.5 M的统一测序深度检测到的基因的韦恩图(reads/基因的阈值分别为1, 5, 10)。

Quantseq有非常高的灵敏度。测序量在26.5M reads时， RNA完整性好的新鲜冷冻样本中检测到25,842个基因(数据未显示)。当单个样本测序数据量在2.5M时，在新鲜冷冻样本中检测出20,081个基因，且每个基因至少有1个read；相应的，在FFPE样本中能检测到15,190个，两者有24%的差异(Fig.8)。但是，当阈值提高到5或者10个reads/基因时，差异分别下降至3%和1%。这些比对结果表明，QuantSeq能够可靠地对冷冻保存和FFPE样品进行基因表达分析。两者之间在低表达基因检测存在的差异，是由于FFPE样本在处理、储存及回收过程中低拷贝转录本很容易降解至无法检测到。

Quantseq用oligo(dT)引物进行逆转录，每个转录本只产生1个片段。这样能够使得无论RNA的质量如何(包含FFPE样本)都可准确定量。常规的mRNA-seq操作流程旨在覆盖整个转录本，但是在使用降解样本时将导致严重的3’偏好性。因此，相对于其他用Poly(A)分选mRNA操作流程，Quantseq 3’mRNA-Seq更有效的对低质量的样本进行建库。

订购信息：